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血液樣本的收集與保存

發(fā)布時間：2014/5/16 13:15:55　瀏覽次數(shù)：54856　[字號：大 中 小]　 [關(guān)閉此頁　打印此頁]

全血根據(jù)收集的條件，分成不抗凝和抗凝兩種。同時，不抗凝分離出的上層黃色的液體我們稱之為血清；抗凝分離出的上層黃色的液體我們稱之為血漿。

標本的存放溫度及時間，血清、血漿及細胞分離的方法步驟也是分析前影響檢驗結(jié)果的重要因素。抽血后，血細胞因代謝需要，要消耗掉部分營養(yǎng)成分，故對這些成分進行測定時，需及時地離心以分離掉細胞成分。

采血前個體的準備情況，如空腹時間的長短、采樣時間的確定及采血時患者的姿勢；止血帶應(yīng)用時間，輸液情況，體育運動，抗凝劑及穩(wěn)定劑的選用；標本的處理等均可影響到某些檢驗指標的水平。故標本采集過程應(yīng)標準化，以最大限度地減少分析前誤差。

一、不抗凝收集血清：

1、無添加劑的干燥空管收集:

血管內(nèi)壁均勻涂有防止掛壁的藥劑(硅油)。它利用血液自然凝固的原理使血液凝固，等血清自然析出后，離心使用。主要用于血清生化(肝功、腎功、心肌酶、淀粉酶等)、電解質(zhì)(血清鉀、鈉、氯、鈣、磷等)、甲狀腺功能、藥物檢測、艾滋病檢測、腫瘤標志物、血清免疫學(xué)檢測。
????亦可直接用干燥EP管收集全血，充分靜置使得紅細胞充分自然凝固后，離心分離出血清待用或保存。

2、用促凝管收集:

采血管內(nèi)壁均勻涂有防止掛壁的硅油，同時添加了促凝劑。促凝劑能激活纖維蛋白酶，使可溶性纖維蛋白變成不可溶性的纖維蛋白聚體，進而形成穩(wěn)定的纖維蛋白凝塊，如果想快點出結(jié)果時，可采用促凝管。一般靜置半小時到1小時，直接離心分離出血清待用或保存,常用于急診生化。

3、含有分離膠及促凝劑的采血管收集：

管壁經(jīng)過硅化處理，并涂有促凝劑可加速血液的凝固，縮短檢驗時間。管內(nèi)加有分離膠，分離膠與PET管具有很好的親和性，確實起到隔離作用，一般即使在普通離心機上，分離膠能將血液中的液體成分(血清)和固體成分(血細胞)徹底分開并積聚在試管中形成屏障。離心后血清中不產(chǎn)生油滴，主要用于血清生化(肝功、腎功、心肌酶、淀粉酶等)、電解質(zhì)(血清鉀、鈉、氯、鈣、磷等)、甲狀腺功能、藥物檢測、艾滋病檢測、腫瘤標志物、血清免疫學(xué)。

????用促凝管的優(yōu)點：

①、加速紅細胞的凝固，無需長時間的靜置；

②、帶有分離膠，有效的將血清分離出來，更好的避免溶血；

????收集血清的缺點：

①、需要紅細胞的充分凝固，所需靜置時間較長；

②、分離出的血清相對較少，1ml全血不抗凝約只能分離出0.2-0.3ml血清。

二、抗凝收集血漿：

收集抗凝全血，輕輕顛倒充分抗凝后，可直接離心分離血漿待用或保存。根據(jù)不同抗凝劑的性能特征，選擇合適的抗凝劑。實驗室常用的抗凝劑有肝素的各種鹽、EDTA及枸櫞酸鈉。

?

1、肝素抗凝：

最常用的抗凝劑，一般情況下對相關(guān)指標都不會有干擾，同時抗凝比例較大（抗凝劑：

全血=1:30），對血液基本沒有稀釋影響。

肝素是一種含有硫酸基團的粘多糖，帶有強大的負電荷，具有加強抗凝血酶III滅活絲

氨酸蛋白酶的作用，從而阻止凝血酶的形成，并有阻止血小板聚集等多種抗凝作用。肝素管一般用于生化及血流變的檢測，是電解質(zhì)檢測的最佳選擇，檢驗血標本中的鈉離子時，不能使用肝素鈉，以免影響檢測結(jié)果。也不能用于白細胞計數(shù)和分類，因肝素會引起白細胞聚集。

盡管用肝素的三種鹽抗凝所得電解質(zhì)濃度無顯著差別，但肝素鋰還是被認為是最好的。這主要是人們認為肝素鈉可使鈉的測定值偏高，肝素銨可使血氨測定值偏高（尿素酶法測定）。

肝素可抑制分子生物學(xué)中常用的一些工具酶，如限制性內(nèi)切酶、Taq酶等，可影響PCR

的實驗結(jié)果。可采用一些方法消除肝素的抑制效應(yīng)，如利用肝素酶，或在分離白細胞后用緩沖液洗滌白細胞兩次以上等。然而，許多實驗工作者仍不愿意在進行分子生物學(xué)實驗時采用肝素作抗凝劑。

2、EDTA抗凝：

乙二胺四乙酸是一種氨基多羧基酸，可以有效地鰲合血液中的鈣離子，鰲合鈣會將鈣從

反應(yīng)點移走將阻止和終止內(nèi)源性或外源性凝血過程，從而防止血液凝固，與其他抗凝劑比較而言，其對血球的凝集及血細胞的形態(tài)影響較小，故通常使用EDTA鹽(2K、3K、2Na)作為抗凝劑。用于一般血液學(xué)檢查，不能用于血凝、微量元素及PCR檢查。
????由于EDTA會螯合重金屬離子，用該抗凝劑的話，部分帶有金屬離子的大分子酶都會有大量損失，具體看客戶測定的指標來選擇，做血常規(guī)的話必須用EDTA抗凝。

???3、枸櫞酸鹽抗凝:

檸檬酸鈉通過作用于血樣中鈣離子鰲合而起抗凝作用，國家臨床實驗室標準化委員會(NCCLS)推薦為3.2％或3.8％，抗凝劑與血比例為1：9，主要用于纖溶系統(tǒng)(凝血酶原時間、凝血酶時間、活化部分凝血酶時間、纖維蛋白原)。采血時應(yīng)注意采足血量，以保證檢驗結(jié)果的準確性，采血后應(yīng)立即輕輕顛倒混勻5-8次。由于抗凝比例較小（抗凝劑：全血=1:9），對血液有一定的稀釋，一般不建議。

選擇抗凝的注意點：

①、每一份樣本所加的抗凝劑的量要一致，同時所取的全血的量也要盡量一致;

②、收集抗凝全血后一定要輕輕顛倒，充分抗凝，防止部分血液未接觸到抗凝劑而導(dǎo)致凝固;

???????③、抗凝全血收集的血漿相對較多（1ml抗凝全血能分離出0.4-0.5ml血漿）;

???????④、抗凝收集的血漿冷凍保存后，解凍時可能會出現(xiàn)絮狀渾濁，如有則需要離心去掉渾濁后

用于測定。

???????血清、血漿收集好后，暫時不測定，可立即低溫凍存，溫度越低越好，中間如不反復(fù)凍融，-20℃以下可保存一個月,-70℃以下可保存三個月。

?

三、收集血清、血漿所用離心轉(zhuǎn)速：

???分離血清或血漿，根據(jù)種屬不同，離心轉(zhuǎn)速也有差異,推薦離心轉(zhuǎn)速為:

???????①、小鼠：一般1000-1500轉(zhuǎn)/分，離心8-10分鐘；

②、大鼠、兔子：一般2000-2500轉(zhuǎn)/分，離心8-10分鐘；

③、人：一般2500-3000轉(zhuǎn)/分，離心8-10分鐘。

四、高脂及溶血因素的影響:

溶血的影響:

溶血對某些檢驗指標的的影響不僅取決于所采用的方法，也取決于所用的分析儀器。采用雙

波長測定法可在一定程度上消除Hb的顏色干擾，然而Hb的干擾并不能完全消除，尤其是當Hb可以與采用的試劑發(fā)生作用時。總的來說，輕微的溶血，對大多數(shù)臨床化學(xué)指標的測定方法無明顯干擾。嚴重的溶血，可能有兩方面的影響：（1）測定成分在紅細胞內(nèi)的濃度高于血漿時，導(dǎo)致測定結(jié)果偏高；（2）測定成分在RBC內(nèi)濃度低于血漿時，產(chǎn)生輕微的稀釋效應(yīng)。

用肉眼觀察標本是否溶血只能是粗略的判斷。只有當血清中血紅蛋白濃度超過20mg/dl時，

肉眼才能見到溶血情況。有人報導(dǎo)0.1％的紅細胞發(fā)生溶血后，其血清外觀與非溶血標本一致；

1％紅細胞發(fā)生溶血后，血清清亮，呈櫻紅色，這樣的標本就代表了中度溶血。

有人建議用血清Hb濃度來對溶血程度進行判斷。非溶血標本血清游離Hb為4.8±3.2mg/dl,中度溶血血清Hb為43.5±13.9mg/dl。即使輕微的溶血也可能導(dǎo)致相應(yīng)指標的測定結(jié)果偏高(如LDH、ACP、K等)，這樣的標本應(yīng)盡量避免使用。

高脂的影響:

高脂血癥所產(chǎn)生的混濁對某些指標測定的影響，同樣取決于所采用的測定方法。一般而言，脂血通過樣品不均一性、水置換、親脂成分的吸收而影響檢驗結(jié)果的準確性。肉眼可見的脂血標本可影響總蛋白的測定、電泳及色譜分析等。

五、全血或紅細胞的收集及保存

????????測定全血或者是紅細胞中相關(guān)指標的話，首先需要收集抗凝全血。

???全血：收集抗凝全血，輕輕顛倒充分抗凝后，可直接定量吸取全血，用冷蒸餾水制備溶血液后

用于不同指標的檢測；也可定量吸取全血，轉(zhuǎn)入EP管，低溫凍存（溫度越低越好），測定

之前解凍并按比例加入冷蒸餾水制成溶血液用于檢測。

???紅細胞：收集抗凝全血，輕輕顛倒充分抗凝后，直接離心吸走血漿，留下層紅細胞，加入3倍

體積的生理鹽水，輕輕顛倒混勻，500～1000轉(zhuǎn)/分,離心5分鐘，棄上清留沉淀紅細胞,

重復(fù)2～3次,至上清液無色為止（洗滌紅細胞）。

????????①、直接定量吸取紅細胞，按比例加入冷蒸餾水制成溶血液待測；

②、定量吸取紅細胞，轉(zhuǎn)入EP管，立即低溫凍存（溫度越低越好），測定之前解凍，并按

比例加入冷蒸餾水制成溶血液用于檢測(解凍后部分紅細胞會破裂,因此樣本冷凍保存之

前必須進行定量)。

????溶血液的制備：定量吸取紅細胞或者全血，按比例加入冷蒸餾水，充分漩渦混勻制備溶血液

(對光觀察，溶液澄清透亮,可顯微鏡觀察紅細胞是否破裂,如未破可延長混勻時間)，稀釋

成不同濃度用于不同指標的檢測。

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